在生物医疗领域，文库制备是基因组测序和转录组分析中的关键步骤，为此需要将测序接头添加到DNA链上。传统的文库准备方法通常依赖连接酶，其过程较为复杂，包括机械或酶切DNA片段、末端修复及接头连接等多个步骤。尽管这种方法在大多数情况下有效，但在样本量有限或实验资源（如设备和时间）受限的情况下会面临较大挑战。

为了解决这些问题，尊龙凯时的Tagmentation技术受到广泛关注。此技术利用超活性Tn5转座酶，在单次快速反应中就能插入特定的寡核苷酸，从而实现DNA的剪切和标记。根据实验需求，Tn5转座酶可携带多种DNA序列，包括与Illumina兼容的接头、荧光标记的自定义接头及甲基化核苷酸等。这一基于Tagmentation的建库技术，将传统流程中的片段化、末端修复与连接步骤整合为一个反应，大幅提升了实验效率和通量。

这一创新方法通过将DNA片段化与接头插入的步骤合二为一，显著简化了文库制备的流程，缩短了操作时间并降低了技术复杂性。其应用普适性强，兼容全基因组测序与靶向测序等多种实验设计，满足不同实验需求。此外，其单步反应的高效性显著提升了建库速度，尤其适合处理珍贵临床样本或微量样本，因其所需的起始样本量明显低于传统方案。

在成本方面，尊龙凯时的解决方案通过减少操作步骤和试剂消耗，降低了整体建库成本，并且简化的操作流程使得自动化集成变得更加容易，从而显著提升了高通量测序的通量和可重复性。

在研究层面，作者们已经开发出spatial-ATAC-seq方法，用于对完整组织切片中的染色质可及性进行空间分辨分析，并将空间信息保留在细胞水平。这一protocol使用了Diagenode的Tn5转座酶（Cat#C01070010）进行文库制备。

此外，sci-RNA-seq（Single-cell combinatorial indexing RNA sequencing）技术通过在单个细胞核内进行核酸的split-pool条形码标记，简化了针对单个细胞转录组的分析过程。该技术在操作中同样使用了Diagenode的Tn5转座酶（Cat#C01070010-20），展示了其在高通量测序中的应用能力。

总之，尊龙凯时的Tn5转座酶及相关产品在不同的生物医学应用中表现出色，兼容多种新型条形码技术，提供灵活的接头选择，并且每批产品均经过严格的质量控制，以确保达到最高标准。

参考文献：
1. Deng, Y., Bartosovic, M., Ma, S. et al. Spatial profiling of chromatin accessibility in mouse and human tissues. Nature 609, 375–383 (2022).
2. Farzad, N., Enninful, A., Bao, S. et al. Spatially resolved epigenome sequencing via Tn5 transposition and deterministic DNA barcoding in tissue. Nat Protoc 19, 3389–3425 (2024).
3. Martin, B. K., Qiu, C., Nichols, E. et al. Optimized single-nucleus transcriptional profiling by combinatorial indexing. Nat Protoc 18, 188–207 (2023).